Tectiviridae

Schemazeichnung eines Textiviridae-Virions, Querschnitt und Außenansicht,[3]

Dei den Tectividiae besitzen die Viruspartikel (Virionen) ein unbehülltes ikosaedrisches Kapsid mit einem Durchmesser von 66 nm. Dieses Kapsid besteht aus 240 Kapsomeren; die jeweils aus Trimeren des Kapsidproteins P3 bestehen. Das Kapsid besitzt an den Ikosaeder-Ecken jeweils einen fiberartigen Fortsatz (spike, Peplomer) von etwa 20 nm Länge, das aus zwei Proteinen (P2 und P5) aufgebaut und an der Basis an einem Pentonprotein verankert ist.

Innerhalb des Kapsids befindet sich ein Lipidmembran-Bläschen, das aus Virusproteinen und der Lipidmembran des Wirtsbakteriums besteht. Zur Ausschleusung des DNA-Genoms wird aus dem inneren Membranbläschen eine schwanzartige Röhre von ca. 60 × 10 nm durch das Kapsid ausgestülpt (daher die Namensgebung Tecti- für die Eigenschaft dieses „verdeckten“ Injektionsapparates). Diese ungewöhnliche Struktur eines Membranbläschens innerhalb eines ikosaedrischen Kapsids teilen sich die Tevtiviridae mit der Familie Corticoviridae.[3][4]

Das Genom der Tectiviridae ist unsegmentiert (monopartit) und besteht aus einem linearem, doppelsträngigem DNA-Molekül von etwa 15 kbp (Kilobasenpaaren) Länge. Dieses ist in verdrillter (coiled) Form innerhalb des Membranbläschens verpackt und die 5'-Enden beider Teilstränge sind kovalent mit Proteinen verknüpft. Der Prototyp der Familie, der Enterobacteria-Phage PRD1, kodiert für 25 Virusproteine.

Details eines Virions von Enterobacteria-Phage PRD1[4]

Dito, Beginn des Eintritts in die Wirtszelle.

Eintrittsmechanismus von Enterobacteria-Phage PRD1.[5]

Diagramm des Replikationszyklus von Enterobakteria-Phage PRD1.[4]

Die Replikation der Tectiviridae geschieht in folgenden Schritten:[3]

1. Infektion: Der Phage heftet sich über sein Spike-Protein P2 an die Zielzelle. Daraufhin wird ein Proteinkomplex aus P2, P5, P31 und einem Teil des Kapsids (P3) freigesetzt, der eine Öffnung im Kapsid erzeugt.
2. Die innere Kapsidmembran verwandelt sich in eine röhrenförmige Struktur (Schwanzstruktur), die durch das Loch im Kapsid ragt und die äußere Membran und Peptidoglykanschicht des Wirts durchdringt, um mit der Plasmamembran des Wirts zu verschmelzen und die virale DNA ins Zytoplasma des Wirts freizusetzen.[Anm. 1]
3. Transkription und Translation der ersten („frühen“) Gene.
4. Replikation der genomischen dsDNA.
5. Transkription und Translation der restlichen („späten“) Gene.
6. Assemblierung: Zusammenbau der noch leeren Kapsidhüllen der Nachkommenschaft.
7. Die neu erzeugte genomische DNA wird in Kapsidhüllen verpackt.
8. Die nun reifen Virionen werden durch Lyse aus der Zelle freigesetzt.

Die Wirte der Tectiviridae sind mesophile Bakterien. Lediglich die Spezies Thermus Phage p37-14 befällt thermophile Bakterien und ist in vulkanischen Quellen und Geysieren zu finden.

Besonders der Enterobacteria-Phage PRD1 zeigt äußerst viele Ähnlichkeiten zu Mitgliedern der Adenoviridae bezüglich der Kapsidstruktur (trimere hexagonale Kapsomere, Pentone, Fibern) und der Genomorganisation (lineare dsDNA, sogenannte Inverted Terminal Repeats, terminale Proteine, DNA-Polymerase Typ B). Diese Ähnlichkeiten deuten auf eine gemeinsame Herkunft, d. h. sie beruhen auf Homologie[6] Beide Familien wurden daher vom ICTV im März 2020 in dieselbe Klasse Tectiliviricetes gestellt.[7]

Nach ICTV Master Species List #38 vom März 2023:[8]

• Familie Tectiviridae

EM-Aufnahme von Virionen des Enterobakterien-Phagen PRD1. Der Inset zeigt ein Virion mit einer herausragenden schwanzartigen Struktur. Balken 100 nm.

• Genus Alphatectivirus[9][10]

• Spezies Pseudomonas-Virus PR4 (wiss. Alphatectivirus PR4)
• Spezies Pseudomonas-Virus PRD1 (wiss. Alphatectivirus PRD1), mit Enterobacteria-Phage PRD1[11][12][7] (Typusspezies, Subtypen:[13] L17, PRD1, PR3, PR4, PR5, PR722; PR722[14])

• Genus Betatectivirus[15][16]
  • Spezies Bacillus-Virus AP50 (wiss. Betatectivirus AP50), mit Bacillus-Phage AP50
  • Spezies Bacillus-Virus Bam35 (wiss. Betatectivirus Bam35), mit Bacillus-Phage Bam35 (Subtypen:[17] Bam35c,[12] pGIL01, pGIL02)
  • Spezies Bacillus-Virus GIL16 (wiss. Betatectivirus GIL16), mit Bacillus-thuringiensis-Phage GIL16c alias Bacillus-Phage ΦNS11[13]
  • Spezies Betatectivirus sato
  • Spezies Betatectivirus sole
  • Spezies Bacillus-Virus Wip1 (wiss. Betatectivirus Wip1)

• Genus Gammatectivirus[18]
  • Spezies Gluconobacter-Virus GC1 (wiss. Gammatectivirus GC1)

Virionen des Streptomyces-Phagen Forthebois, rechts mit „Nonotube“.[19]

Virionen des Streptomyces-Phagen WheeHeim, rechts mit „Nonotube“.[19]

• Genus Deltatectivirus[19]
  • Spezies Streptomyces-Virus Forthebois (wiss. Deltatectivirus forthebois)[19]
  • Spezies Streptomyces-Virus WheeHeim (wiss. Deltatectivirus wheeheim)[19]
• Genus Epsilontectivirus

• Spezies Rhodococcus-Virus Toil (wiss. Epsilontectivirus toil)[19][20]

• vorgeschlagene Mitglieder der Familie ohne Gattungszuweisung:

• weitere Spezies siehe Taxonomie des NCBI: nicht-klassifizierte Tectiviridae.[21]

• frühere Mitglieder:

• Spezies „Thermus Phage P37-14“ (offizieller Status vom ICTV aberkannt, da Gensequenz fehlt)[22][12]

1. Vergleichbare Mechanismen findet man bei den Caudoviricetes und der Gattung Chlorovirus.

• C. M. Fauquet, M. A. Mayo et al.: Eighth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses, London, San Diego, 2004
• David M. Knipe, Peter M. Howley et al. (Hrsg.): Fields' Virology, 4. Auflage, Philadelphia 2001

• NCBI Taxonomy Browser: Tectiviridae (species).

1. ICTV: ICTV Master Species List 2019.v1, New MSL including all taxa updates since the 2018b release, March 2020 (MSL #35)
2. ICTV: Master Species List 2018b.v2 #34, März 2019
3. SIB: Tectiviridae, auf: Expasy ViralZone
4. ICTV: dsDNA Viruses – Textiviridae, ICTV 9th Report (2011)
5. Sari Mäntynen, Lotta-Riina Sundberg, Hanna M. Oksanen, Minna M. Poranen: Half a Century of Research on Membrane-Containing Bacteriophages: Bringing New Concepts to Modern Virology.Iin: MDPI: Viruses, Band 11, Nr. 1, Section Bacterial Viruses, 2019, S. 76; doi:10.3390/v11010076, PDF (englisch).
6. Patrick Forterre: Evolution: Die wahre Natur der Viren, in: Spektrum August 2017, S. 37 (Online-Artikel vom 19. Juli 2017).
7. ICTV: ICTV Taxonomy history: Pseudomonas virus PRD1, EC 51, Berlin, Germany, July 2019; Email ratification March 2020 (MSL #35)
8. ICTV: Taxonomy Browser, abgerufen am 9. November 2019
9. SIB: Alphatectivirus, auf: ViralZone
10. NCBI: Alphatectivirus (genus)
11. NCBI: Genomsequenz und Proteine des Phagen PRD1
12. Natalya Yutin, Disa Bäckström, Thijs J. G. Ettema, Mart Krupovic, Eugene V. Koonin: Vast diversity of prokaryotic virus genomes encoding double jelly-roll major capsid proteins uncovered by genomic and metagenomic sequence analysis, in: Virol Jv., Band 15; 10. April 2018; doi:10.1186/s12985-018-0974-y, PMC 5894146 (freier Volltext), PMID 29636073 (englisch) .
13. Céline Verheust, Nadine Fornelos, Jacques Mahillon: GIL16, a New Gram-Positive Tectiviral Phage Related to the Bacillus thuringiensis GIL01 and the Bacillus cereus pBClin15 Elements, in: J Bacteriol. 187(6), März 2005, S. 1966–1973, doi:10.1128/JB.187.6.1966-1973.2005, PMC 1064052 (freier Volltext) (englisch).
14. NCBI: Enterobacteria phage PR772 (no rank)
15. SIB: Betatectivirus, auf: ViralZone
16. NCBI: Betatectivirus (genus)
17. NCBI: Bacillus virus Bam35 (species)
18. NCBI: Gammatectivirus (genus)
19. Steven M. Caruso, Tagide N. deCarvalho, Anthony Huynh, George Morcos, Nansen Kuo, Shabnam Parsa, Ivan Erill: A Novel Genus of Actinobacterial Tectiviridae. In: MDPI: Viruses, Band 11, Nr. 12, 7. Dezember 2019; doi:10.3390/v11121134, ResearchGate (englisch).
20. NCBI: Rhodococcus phage Toil (species)
21. NCBI Taxonomy Browser: unclassified Tectiviridae (list).
22. Proposal 2017.013B