Phytoplasma

Phytoplasmen sind zellwandfreie Bakterien, die als obligate Parasiten im pflanzlichen Phloem wachsen.

Phytoplasma
Systematik
Abteilung: Tenericutes
Klasse: Mollicutes
Ordnung: Acholeplasmatales
Familie: Acholeplasmataceae
Gattung: Phytoplasma
Wissenschaftlicher Name
Candidatus “Phytoplasma”
Von Phytoplasmen befallene Kokospalmen mit Blattvergilbungen

Phytoplasmen wurden 1967 entdeckt.[1] Seit 1994 werden sie einer eigenen Gattung (Candidatus “Phytoplasma”)[2] zugeordnet, zuvor wurden sie der Gattung Mycoplasma zugerechnet und als MLO (englisch Mycoplasma-like organism) bezeichnet.

Beschreibung

Diese Vertreter der Klasse Mollicutes werden von phloemsaugenden Insekten wie Zikaden von Pflanze zu Pflanze übertragen; die Insekten wirken daher als Vektoren. Die Bakterien sind außerhalb von Pflanzen oder Insekten nicht überlebensfähig und daher nicht in vitro kultivierbar. Sie sind zumeist unter 1 µm groß und haben eine pleiomorphe oder filamentöse Form. Im Vergleich zu den Bacillus-/ Clostridium-Vorfahren ist ihr Genom als Anpassung auf eine parasitische Lebensweise stark reduziert; artabhängig liegt die Genomgröße zwischen 530 und 1350 kbp.[3] Es fehlen Gene, die für die Synthese von ATP, Proteinen und Nukleotiden notwendig sind. Dementsprechend sind Phytoplasmen auf den Import solcher Metabolite aus den Wirtszellen angewiesen.

Phytoplasmosen

Zu den bekannten Wirtspflanzen zählen u. a. Nutzpflanzen wie Kokospalme, Kirsch- und Apfelbäume, Weinreben, Zuckerrohr und Reis. Der Pathogenbefall führt zu Blattvergilbungen, Nekrosen und Wuchsanomalien wie Zwergwuchs, Phyllodie (Bildung von blattähnlichen Strukturen an Stelle von Blüten) und Besenwuchs. Zusammenfassend werden diese Symptome als Phytoplasmose bezeichnet. Die Beeren von betroffenen Weinreben schrumpfen im reifen Zustand, werden sauer und können abfallen. Die Blattvergilbungen werden durch eine inhibierte Chlorophyll-Synthese und durch einen beeinträchtigten Assimilat-Transport in den Blättern ausgelöst. Phyllodie resultiert aus Einwirkungen der Phytoplasmen auf die Regulation von Blütengenen.[4]

Phytoplasmen-Befall kann mit PCR-Testverfahren überprüft werden. Phytoplasmosen verursachen einen erheblichen wirtschaftlichen Schaden, da sie auch viele Kulturpflanzen schädigen. Um Ernteeinbußen zu vermeiden, werden resistente Sorten angebaut und die Phytoplasmen übertragenden Insekten bekämpft.

Bedeutende Phytoplasmosen

Die folgende Liste enthält landwirtschaftlich und gartenbaulich bedeutende Phytoplasmosen. Neben der englischen, international verwendeten Bezeichnung der Erkrankung sind jeweils auch der deutsche Name bzw. die Symptome der Erkrankung sowie die Wirtspflanze(n) angegeben. Falls vorhanden, ist die Gruppe, in die die jeweiligen Erreger eingeteilt wurden, aufgeführt. Angegeben ist außerdem der Code, unter dem die Erregerart in der GenBank geführt wird.

Internationaler Name Deutscher Name /Symptome Phytoplasma-Spezies Wirtspflanze(n) Gruppe/Untergruppe Genbank-Code Beleg
Nigerian awka diseaseAwka-Krankheit'Candidatus Phytoplasma cocosnigeriae'Kokospalme (Cocos nucifera)16SrXXII-AY14175[5]
Tanzanian lethal diseaseVerfall der Kokosnuss'Candidatus Phytoplasma cocostanzaniae'Kokospalme (Cocos nucifera)unbestimmtX80117[5]
Loofah witches' broomHexenbesen der Luffagewächse'Candidatus Phytoplasma luffae'Luffa-Arten16SrVIII-AAF086621[6]
Palm lethal yellowingPalmenvergilbung'Candidatus Phytoplasma palmae'mind. 37 Palmenarten, darunter auch Kokos- und Dattelpalme16SrIV-AU18747[7]
Western X-diseaseVerfall der Traubenkirsche'Candidatus Phytoplasma'Virginische Traubenkirsche, Prunus-Arten16SrIII-AL04682[8]
Stolbur phytoplasmaStolbur'Candidatus Phytoplasma solani'Nachtschattengewächse, v. a. Tomaten und Kartoffeln16SrXII-AAF248959[9]
Flavescence doreeGoldgelbe Vergilbung'Candidatus Phytoplasma vitis'Weinreben (Vitis)16SrV-CAF176319[10]
Papaya yellow crinkleKräuselkrankheit und Vergilbung der Papaya'Candidatus Phytoplasma aurantifolia'Papaya (Carica papaya)16SrII-DY10097[11]
Allocasuarina yellowsAllocasuarina-Vergilbung'Candidatus Phytoplasma allocasuarinae'Allocasuarina-ArtenunbestimmtAY135523[12]
Potato purple top wiltSpitzenwelke der Kartoffel'Candidatus Phytoplasma americanum'Kartoffel16SrXVIIIDQ174122[13]
Lime witches' broomHexenbesen bei Limetten'Candidatus Phytoplasma aurantifolia'Echte Limette (Citrus × aurantifolia)16SrII-BU15442[14]
Grapevine yellowsVergilbung an Reben'Candidatus Phytoplasma australiense'Weinreben (Vitis)16SrXIIL76865[15]
Balanites witches' broomHexenbesen bei Datteln'Candidatus Phytoplasma balanitae'Datteln (Balanites)16SrVAB689678[16]
Hibiscus witches' broomHexenbesen beim Hibiskus'Candidatus Phytoplasma brasiliense'Hibiskusarten (Hibiscus)16SrXVAF147708[17]
Papaya bunchy topBüschelgipfelkrankheit der Papaya'Candidatus Phytoplasma caricae'Papaya (Carica papaya)16SrXVIIAY725234[11]
Chestnut witches' broomHexenbesen bei Kastanien'Candidatus Phytoplasma castaneaeKastanien (Castanea)16SrXIXAB054986[18]
Bindweed yellowsVergilbung an Winden'Candidatus Phytoplasma convolvuli'Windengewächse (Convolvulaceae)16SrXIIJN833705[19]
Soybean stuntSojabohnen-Stauche'Candidatus Phytoplasma costaricanum'Sojabohne (Glycine max)16SXXXIHQ225630[20]
Sugarcane white leafWeißblättrigkeit beim Zuckerrohr'Candidatus Phytoplasma cynodontis'Zuckerrohr (Saccharum spp. und ihre Hybride)16SrXIAB052874[21]
Sugarcane white leafWeißblättrigkeit beim Zuckerrohr'Candidatus Phytoplasma cynodontis'Zuckerrohr (Saccharum spp. und ihre Hybride)16SrXI-CX76432[21]
Areca palm yellow leafGelbblättrigkeit der Goldfruchtpalme'Candidatus Phytoplasma cynodontis'Goldfruchtpalme (Dypsis lutescens)16SrXI-AJN967909[22]
Bermuda grass white leafWeißblättrigkeit beim Hundszahngras'Candidatus Phytoplasma cynodontis'Hundszahngras (Cynodon dactylon)16SrXIVAJ550985[23]
Sorghum grassy shootGrastriebigkeit der Sorghumhirse'Candidatus Phytoplasma cynodontis'Sorghumhirsen (Sorghum)unbestimmtAF509324[24]
Strawberry witches' broomHexenbesen bei Erdbeeren'Candidatus Phytoplasma fragariae'Erdbeeren (Fragaria)16SrXII-EDQ086423[25]
Ash yellowsVergilbung der Eschen'Candidatus Phytoplasma fraxini'Eschen (Fraxinus)16SrVII-AAF092209[26]
Sugarcane Yellow LeafGelbblättrigkeit des Zuckerrohrs'Candidatus Phytoplasma graminis'Zuckerrohr (Saccharum spp. und ihre Hybride)16SrXVIAY725228[21]
Hydrangea phyllodyPhyllodie (Verlaubung) bei Hortensien'Candidatus Phytoplasma japonicum'Hortensien (Hydrangea)16SrXII-DAB010425[27]
Parsley leaf of tomatoPetersilienlaubigkeit der Tomate'Candidatus Phytoplasma lycopersici'Tomate (Solanum lycopersicum)unbestimmtEF199549[28]
Periwinkle phyllodyPhyllodie (Verlaubung) beim Immergrün'Candidatus Phytoplasma malasianum'Immergrün (Vinca)16SrXXXIIEU371934[29]
Apple proliferationApfeltriebsucht'Candidatus Phytoplasma mali'Malus-Arten16SrX-AAJ542541[30]
Cassia italica witches' broomHexenbesen an Senna italica'Candidatus Phytoplasma omanense'Senna italica16SrXXIXEF666051[31]
Rice yellow dwarfVergilbung und Verzwergung beim Reis'Candidatus Phytoplasma oryzae'Reis (Oryza)16SrXI-AD12581[32]
Rice yellow dwarfVergilbung und Verzwergung beim Reis'Candidatus Phytoplasma oryzae'Reis (Oryza)16SrXI-AAB052873[32]
Almond lethal diseaseMandelsterben'Candidatus Phytoplasma phoenicium'Mandelbaum (Prunus dulcis)16SrIX-DAF515636[33]
Pine shoot proliferationKieferntriebsucht'Candidatus Phytoplasma pini'Kiefern (Pinus)16SrXXIAJ632155[34]
Prunus X-diseasePrunus-X-Krankheit'Candidatus Phytoplasma pruni'Prunus-Arten16SrIII-AJQ044393[35]
European stone fruit yellowsVergilbung der Steinfrüchte'Candidatus Phytoplasma prunorum'Prunus-Arten16SrX-FAJ542544[36]
Pear declineBirnenverfall'Candidatus Phytoplasma pyri'Birnen (Pyrus)16SrX-CAJ542543[37]
Buckthorn witches' broomHexenbesen beim Kreuzdorn'Candidatus Phytoplasma rhamni'Kreuzdorne (Rhamnus)16SrXXX76431[38]
Rubus stuntRubus-Stauche'Candidatus Phytoplasma rubi'Rubus-Arten16SrVAY197648[39]
Bois noirSchwarzholzkrankheit'Candidatus Phytoplasma solani'Reben (Vitis)16SrXIIJQ730746[40]
Spartium witches' broomHexenbesen beim Ginster'Candidatus Phytoplasma spartii'Ginster (Spartium)16SrX-DX92869[12]
Salt cedar witches' broomHexenbesen an Tamarisken'Candidatus Phytoplasma tamaricis'Tamarisken (Tamarix)16SrXXXFJ432664[41]
Clover proliferationTriebsucht beim Klee'Candidatus Phytoplasma trifolii'Klee (Trifolium)16SrVI-AAY390261[42]
Elm yellowsVergilbung bei Ulmen'Candidatus Phytoplasma ulmi'Ulmen (Ulmus)16SrV-AAY197655[43]
Jujube witches' broomHexenbesen an Jujuben'Candidatus Phytoplasma ziziphi'Chinesische Jujube (Ziziphus zizyphus)16SrV-BAB052876[44]
Aster yellowsVergilbung der Astern'Candidatus Phytoplasma asteris'Astern (Aster)16SrIM30790[45]
Mexican periwinkle virescenceVergrünung am mexikanischen Immergrünnoch nicht nachgewiesenImmergrün (Vinca)16SrXIII-AAF248960[46]
Sorghum bunchy shootBüschelgipfelkrankheit der Sorghumhirsennoch nicht nachgewiesenSorghumhirsen (Sorghum)16SrXXIV-AAF509322[24]
Sugarcane yellowsZuckerrohrvergilbungnoch nicht nachgewiesenZuckerrohr (Saccharum spp. und ihre Hybride)16SrXXVI-AAJ539179[21]
Sugarcane yellowsZuckerrohrvergilbungnoch nicht nachgewiesenZuckerrohr (Saccharum spp. und ihre Hybride)16SrXXVII-AAJ539180[21]

Einzelnachweise
  1. Y. Doi, M. Teranaka, K. Yora, H. Asuyama: Mycoplasma or PLT grouplike microorganisms found in phloem elements of plants infected with mulberry dwarf, potato witches' broom, aster yellows, or Paulownia witches' broom. In: Annals of the Phytopathological Society of Japan. 33, 1967, S. 259–266.
  2. boku.ac.at
  3. C. Marcone, H. Neimark, A. Ragozzino, U. Lauer, E. Seemüller: Chromosome Sizes of Phytoplasmas Composing Major Phylogenetic Groups and Subgroups. In: Phytopathology. (APS Press) 89 (9), 1999, S. 805–810. doi:10.1094/PHYTO.1999.89.9.805.
  4. P. Pracros, J. Renaudin, S. Eveillard, A. Mouras, M. Hernould: Tomato Flower Abnormalities Induced by Stolbur Phytoplasma Infection Are Associated with Changes of Expression of Floral Development Genes. In: Molecular Plant Microbe Interactions. (APS Press) 19 (1), 2006, S. 62–68. doi:10.1094/MPMI-19-0062.
  5. A. M. Tymon, P. Jones, N. A. Harrison: Phylogenetic relationships of coconut phytoplasmas and the development of specific oligonucleotide PCR primers. In: Ann. Appl. Biol. 132 (3), 1998, S. 437–452.
  6. H. G. Montano, P. S. T. Brioso, J. J. O. Cunha, D. V. Figueiredo, J. P. Pimentel: First report of group 16SrIII phytoplasma in loofah (Luffa cylindrica). In: Bulletin of Insectology. 60, 2007, S. 277–278.
  7. Nigel A. Harrison, Monica L. Elliott: Lethal Yellowing (LY) of Palm. auf der Homepage der University of Florida IFAS Extension, abgerufen am 27. März 2016.
  8. Western x-disease - a Spiroplasma. auf der Homepage Agriculture and Agri-Food des Government of Canada, abgerufen am 27. März 2016.
  9. Data Sheets on Quarantine Pests: Potato stolbur phytoplasma. (Memento des Originals vom 27. März 2016 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.eppo.int der European and Mediterraneaen Plant Protection Organization (EPPO), abgerufen am 27. März 2016.
  10. Landwirtschaftliches Technologiezentrum Augustenberg: Grapevine flavescence dorée phytoplasma – GoldgelbeVergilbung an Wein. (Memento des Originals vom 27. März 2016 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.ltz-bw.de, Hinweise zur Pflanzengesundheit - Quarantäne-Schadorganismen, abgerufen am 27. März 2016.
  11. K. S. Gibb, D. M. Persley, B. Schneider, J. E. Thomas: Phytoplasmas Associated with Papaya Diseases in Australia. In: Plant Disease. 80 (2), Januar 1996, S. 174.
  12. C. Marcone, K. S. Gibb, C. Streten, B. Schneider: 'Candidatus Phytoplasma spartii', 'Candidatus Phytoplasma rhamni' and 'Candidatus Phytoplasma allocasuarinae', respectively associated with spartium witches'-broom, buckthorn witches'-broom and allocasuarina yellows diseases. In: Int J Syst Evol Microbiol. 54 (Pt 4), 2004, S. 1025–1029.
  13. Data Sheets on Quarantine Pests: Potato purple-top wilt phytoplasma. (Memento des Originals vom 27. März 2016 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.eppo.int der European and Mediterraneaen Plant Protection Organization (EPPO), abgerufen am 27. März 2016.
  14. Dilip Ghosh, Sumit Bhose, R. Manimekalai, S. Gowda: Molecular detection of Candidatus Phytoplasma spp. causing witches’ broom disease of acid lime (Citrus aurantifolia) in India. In: Journal of Plant Biochemistry and Biotechnology. Volume 22, Issue 3, Juli 2013, S. 343–347.
  15. R. E.Davis, E. L. Dally, D. E. Gundersen, I. M. Lee, N. Habili: "Candidatus phytoplasma australiense," a new phytoplasma taxon associated with Australian grapevine yellows. In: Int J Syst Bacteriol. 47 (2), 1997, S. 262–269.
  16. N. K. Win, S. Y. Lee, A. Bertaccini, S. Namba, H. Y. Jung: 'Candidatus Phytoplasma balanitae' associated with witches' broom disease of Balanites triflora. In: Int J Syst Evol Microbiol. 63 (Pt 2), Februar 2013, S. 636–640, doi:10.1099/ijs.0.041566-0
  17. H. G. Montano, R. E. Davis, E. L. Dally, S. Hogenhout, J. P. Pimentel, P. S. Brioso: 'Candidatus Phytoplasma brasiliense', a new phytoplasma taxon associated with hibiscus witches' broom disease. In: Int J Syst Evol Microbiol. 51, Mai 2001, S. 1109–1118.
  18. H. Y. Jung, T. Sawayanagi, S. Kakizawa, H. Nishigawa, S. Miyata, K. Oshima, M. Ugaki, J. T. Lee, T. Hibi, S. Namba: 'Candidatus Phytoplasma castaneae', a novel phytoplasma taxon associated with chestnut witches' broom disease. In: Int J Syst Evol Microbiol. 52 (Pt 5), September 2002, S. 1543–1549.
  19. M. Martini, C. Marcone, J. Mitrović, M. Maixner, D. Delić, A. Myrta, P. Ermacora, A. Bertaccini, B. Duduk: 'Candidatus Phytoplasma convolvuli', a new phytoplasma taxon associated with bindweed yellows in four European countries. In: Int J Syst Evol Microbiol. 62 (Pt 12), Dezember 2012, S. 2910–2915. doi:10.1099/ijs.0.038612-0
  20. I. M. Lee, K. D. Bottner-Parker, Y. Zhao, W. Villalobos, L. Moreira: 'Candidatus Phytoplasma costaricanum' a novel phytoplasma associated with an emerging disease in soybean (Glycine max). In: Int J Syst Evol Microbiol. 61 (Pt 12), Dezember 2011, S. 2822–2826; doi:10.1099/ijs.0.029041-0
  21. C. Marcone: Phytoplasma Diseases of Sugarcane. In: Sugar Tech. Vol. 4 (3 & 4), 2002, S. 79–85.
  22. G. P. Rao, S. Mall, S. K. Raj, S. K. Snehi: Phytoplasma diseases affecting various plant species in India. In: Acta Phytopathologica et Entomologica Hungarica. Volume 46, Juni 2011, S. 59–99.
  23. C. Marcone, B. Schneider, E. Seemüller: 'Candidatus Phytoplasma cynodontis', the phytoplasma associated with Bermuda grass white leaf disease. In: E.Int J Syst Evol Microbiol. 54 (Pt 4), Juli 2004, S. 1077–1082.
  24. Y. Arocha Rosete, Phil Jones: Sorghum bushy shoot (SBS) and grassy shoot (SGS). In: Phyllis G. Weintraub, Phil Jones (Hrsg.): Phytoplasmas: Genomes, Plant Hosts and Vectors. CABI 2010, S. 177–178.
  25. Data Sheets on Quarantine Pests: Strawberry witches' broom phytoplasma. (Memento des Originals vom 27. März 2016 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.eppo.int der European and Mediterraneaen Plant Protection Organization (EPPO), abgerufen am 27. März 2016.
  26. Jill D. Pokorny, Wayne A. Sinclair: How to Identify and Manage Ash Yellows in Forest Stands and Home Landscapes. United States Forest Service, Northern Area State & Private Forestry, 1994.
  27. T. Sawayanagi, N. Horikoshi, T. Kanehira, M. Shinohara, A. Bertaccini, M. T. Cousin, C. Hiruki, S. Namba: 'Candidatus phytoplasma japonicum', a new phytoplasma taxon associated with Japanese Hydrangea phyllody. In: Int J Syst Bacteriol. 49 (3), Juli 1999, S. 1275–1285.
  28. P. Jones, Y. Arocha, O. Antesana, E. Montellano, P. Franco: 'Hoja de perejil’ (parsley leaf) of tomato and morrenia little leaf, two new diseases associated with a phytoplasma in Bolivia. In: Plant Pathology. 54, Issue 2, April 2005, S. 235; doi:10.1111/j.1365-3059.2005.01132.x
  29. N. Nejat, G. Vadamalai, R. E. Davis, N.A. Harrison, K. Sijam, M. Dickinson, S. N. Abdullah, Y. Zhao: 'Candidatus Phytoplasma malaysianum', a novel taxon associated with virescence and phyllody of Madagascar periwinkle (Catharanthus roseus). In: Int J Syst Evol Microbiol. 63 (Pt 2), Februar 2013, S. 540–548; doi:10.1099/ijs.0.041467-0
  30. Data Sheets on Quarantine Pests: Apple proliferation phytoplasma. (Memento des Originals vom 27. März 2016 im Internet Archive)  Info: Der Archivlink wurde automatisch eingesetzt und noch nicht geprüft. Bitte prüfe Original- und Archivlink gemäß Anleitung und entferne dann diesen Hinweis.@1@2Vorlage:Webachiv/IABot/www.eppo.int der European and Mediterraneaen Plant Protection Organization (EPPO), abgerufen am 27. März 2016.
  31. N. A. Al-Saady, A. J. Khan, A. Calari, A. M. Al-Subhi, A. Bertaccini: Candidatus Phytoplasma omanense. associated with witches'-broom of Cassia italica (Mill.) Spreng. in Oman. In: Int J Syst Evol Microbiol. 58 (2), Februar 2008, S. 461–466; doi:10.1099/ijs.0.65425-0.
  32. Hee-Young Jung, Toshimi Sawayanagi, Porntip Wongkaew, Shigeyuki Kakizawa, Hisashi Nishigawa, Wei Wei, Kenro Oshima, Shin-ichi Miyata, Masashi Ugaki, Tadaaki Hibi, Shigetou Namba: Candidatus Phytoplasma oryzae, a novel phytoplasma taxon associated with rice yellow dwarf disease. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 53, 2003, S. 1925–1929; doi:10.1099/ijs.0.02531-0
  33. E. Verdin, P. Salar, J. L. Danet, E. Choueiri, F. Jreijiri, S. El Zammar, B. Gélie, J. M. Bové, M. Garnier: 'Candidatus phytoplasma phoenicium' sp. nov., a novel phytoplasma associated with an emerging lethal disease of almond trees in Lebanon and Iran. In: Int J Syst Evol Microbiol. 53 (3), Mai 2003, S. 833–838.
  34. B. Schneider, E. Torres, M. P. Martín, M. Schröder, H. D. Behnke, E. Seemüller: 'Candidatus Phytoplasma pini', a novel taxon from Pinus silvestris and Pinus halepensis. In: Int J Syst Evol Microbiol. 55 (1), Januar 2005, S. 303–307.
  35. R. E. Davis, Y. Zhao, E. L. Dally, I. M. Lee, R. Jomantiene, S. M. Douglas: 'Candidatus Phytoplasma pruni', a novel taxon associated with X-disease of stone fruits, Prunus spp.: multilocus characterization based on 16S rRNA, secY, and ribosomal protein genes. In: Int J Syst Evol Microbiol. 63 (2), Februar 2013, S. 766–776; doi:10.1099/ijs.0.041202-0
  36. C. Marcone, B. Jarausch, W. Jarausch: Candidatus Phytoplasma prunorum, the causal agend of European Stone Fruit Yellows: an overview. In: Journal of Plant Pathology. 92 (1), 2010, S. 19–34.
  37. L. Giunchedi, C. Poggi Pollini, R. Bissani, A. R. Babini, V. Vicchi: Etiology of a pear decline disease in Italy and susceptibility of pear variety and rootstock to phytoplasma-associated pear decline. In: Acta Horticulturae. 386, 1995, S. 489–495.
  38. Jelena Jovic, Oliver Krstic, Ivo Tosevski, Andre Gassmann: The occurrence of ‘Candidatus phytoplasma rhamni’ in Rhamnus cathartica L. without symptoms. In: Bulletin of Insectology. 64 (Supplement), 2011, S. 227–228.
  39. Sylvie Malembic-Maher, Pascal Salar, Luisa Filippin, Patricia Carle, Elisa Angelini, Xavier Foissac: Genetic diversity of European phytoplasmas of the 16SrV taxonomic group and proposal of 'Candidatus Phytoplasma rubi'. In: International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. 61, 2011, S. 2129–2134.
  40. F. Quaglino, Y. Zhao, P. Casati, D. Bulgari, P. A. Bianco, W. Wei, R. E. Davis: 'Candidatus Phytoplasma solani', a novel taxon associated with stolbur- and bois noir-related diseases of plants. In: Int J Syst Evol Microbiol. 63 (Pt 8), August 2013, S. 2879–2894; doi:10.1099/ijs.0.044750-0
  41. Y. Zhao, Q. Sun, W. Wei, R. E. Davis, W. Wu, Q. Liu: 'Candidatus Phytoplasma tamaricis', a novel taxon discovered in witches'-broom-diseased salt cedar (Tamarix chinensis Lour.). In: Int J Syst Evol Microbiol. 59 (10), Oktober 2009, S. 2496–2504; doi:10.1099/ijs.0.010413-0
  42. C. Hiruki, K. Wang: Clover proliferation phytoplasma: 'Candidatus Phytoplasma trifolii'. In: Int J Syst Evol Microbiol. 54 (Pt 4), Juli 2004, S. 1349–1353.
  43. N. L. Arismendi, R. Riegel, R. Carrillo: In vivo transmission of 'candidatus Phytoplasma ulmi' by Amplicephalus curtulus (Hemiptera: Cicadellidae) and its effect on ryegrass (Lolium multiflorum cv. tama). In: J Econ Entomol. 107 (1), Februar 2014, S. 83–91.
  44. R.R. Wang, H.Q. Mou, X.X. Gao, L. Chen, M.F. Li, Q.C. Wang: Cryopreservation for eradication of Jujube witches' broom phytoplasma from Chinese jujube (Ziziphus jujuba). In: Annals of Applied Biology. 166 (2), März 2015, S. 218–228.
  45. I. M. Lee, D. E. Gundersen-Rindal, R. E. Davis, K. D. Bottner, C. Marcone, E. Seemüller: 'Candidatus Phytoplasma asteris', a novel phytoplasma taxon associated with aster yellows and related diseases. In: Int J Syst Evol Microbiol. 54 (Pt 4), Juli 2004, S. 1037–1048.
  46. A. F. Omar, A. A. Emeran, J. M. Abass: Detection of Phytoplasma Associated with Periwinkle Virescence in Egypt. In: Plant Pathology Journal. 7(1), Januar 2008, S. 92–97.
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